間充質幹細胞成軟骨誘導分化試劑盒
,成軟骨誘導液
貨號:YJ-MSCYD-003
價(jia) 格: 1980.0
規格: 100ml 200ml
產(chan) 品描述
本產(chan) 品為(wei) 團隊精心優(you) 化的間充質幹細胞成軟骨誘導分化試劑盒,可增強間充質幹細胞向成軟骨細胞分化的能力。
本產(chan) 品僅(jin) 用於(yu) 科研用途,不可用於(yu) 診斷、治療、臨(lin) 床、家庭及其他用途。
產(chan) 品組成成分及保存
試劑名稱 | 體(ti) 積(100mL規格/200mL規格) | 保存條件 |
誘導分化添加劑Ⅰ | 5mL / 10mL | -20℃,1 Year |
誘導分化添加劑Ⅱ | 1mL / 2mL | -20℃,1 Year |
優(you) 質胎牛血清 | 10mL / 20mL | -20℃,1 Year |
細胞基礎培養(yang) 基 | 84mL / 168mL | 4℃,1 Year |
甲苯胺藍染色液 | 5mL / 10mL | RT(室溫),1 Year |
Ø 注意:1.為(wei) 保證產(chan) 品的有效性,請避免反複凍融。
2. 誘導分化添加劑Ⅱ須現用現配,加入培養(yang) 基後,須在12小時內(nei) 用完,否則可能影響實驗效果。
3. 配製好的誘導分化預混液(不含誘導分化添加劑Ⅱ)保存於(yu) 2-8℃,有效期為(wei) 2周。
產(chan) 品使用說明(2D/3D培養(yang) )
1. 成軟骨誘導分化培養(yang) 基的配製
①室溫條件下融化添加劑及血清。(注意:若添加劑或血清中有沉澱物,屬正常現象,無須過濾,避免成分丟(diu) 失。)
②配製誘導分化預混液:以下簡稱預混液。根據實驗用量,於(yu) 無菌操作台中配製。建議每次配製50mL,先加細胞基礎培養(yang) 基和胎牛血清,再加誘導分化添加劑。(配製比例見表一)
試劑成分 | 配製比例 | 50mL配製體(ti) 係 |
誘導分化添加劑Ⅰ | 5% | 2.5mL |
優(you) 質胎牛血清 | 10% | 5mL |
| 85% | 42.5mL |
③配製誘導分化完全培養(yang) 基:根據實驗用量,按照1%的比例向預混液中添加誘導分化添加劑Ⅱ,如每1mL預混液添加10uL誘導分化添加劑Ⅱ。(注意:誘導分化添加劑Ⅱ須現用現加,配製完成的誘導分化完全培養(yang) 基12h內(nei) 使用完,否則將失效。)
2. 2D成軟骨誘導分化實驗步驟
①建議取第3~5代、純度達90%以上、狀態良好的間充質幹細胞,將其消化下來,離心收集,使用含10%FBS的培養(yang) 基調整細胞密度,均勻鋪於(yu) 培養(yang) 瓶/板中。將接種好的細胞置於(yu) 37℃,5%CO2,飽和濕度的培養(yang) 箱中培養(yang) 。(細胞接種詳情參考表二)
培養(yang) 器皿 | 底麵積 | 細胞量 | 培養(yang) 液體(ti) 積 |
24孔培養(yang) 板 | 2cm/孔 | 2×105cell/孔 | 1mL/孔 |
12孔培養(yang) 板 | 4.5cm/孔 | 4.5×105cell/孔 | 2mL/孔 |
6孔培養(yang) 板 | 9.6cm/孔 | 9.6×105cell/孔 | 2mL/孔 |
T25培養(yang) 瓶 | 25cm | 25×105cell | 5mL |
6cm培養(yang) 皿 | 21cm | 21×105cell | 5mL |
10cm培養(yang) 皿 | 55cm | 55×105cell | 10mL |
表二
②待細胞匯合度達80%~100%時,即可進行誘導分化。
③小心吸棄細胞培養(yang) 上清,沿孔壁緩慢加入提前配製好的誘導分化完全培養(yang) 基,置於(yu) 37℃恒溫細胞培養(yang) 箱中培養(yang) 。(注意:完全培養(yang) 基加入細胞前需提前置於(yu) 37℃預熱。)
④每2day~3day換用新鮮的誘導分化完全培養(yang) 基。換液時,若細胞培養(yang) 上清顏色變為(wei) 澄清的黃色,是由於(yu) 細胞量較大,培養(yang) 基消耗較快導致的,請及時調整為(wei) 每日換液。(注意:完全培養(yang) 基加入前需提前置於(yu) 37℃預熱。)
⑤細胞誘導3周後,即可進行甲苯胺藍染色鑒定。
3. 2D成軟骨細胞甲苯胺藍染色分析
①細胞誘導分化結束後,小心吸棄細胞培養(yang) 上清,1×PBS潤洗1~2次,室溫固定30 min。(細胞固定液為(wei) 4%中性甲醛溶液等,體(ti) 積參考表二)
②吸棄細胞固定液,1×PBS潤洗2次。沿孔壁緩慢加入甲苯胺藍染色液,染液體(ti) 積請參考表二,室溫染色30min。(注意:染色液底部可能會(hui) 有沉澱,吸取時盡量不要觸及底部。若染色後有沉澱,1×PBS洗去即可。)
③吸出染色液,1×PBS潤洗,去掉浮色。顯微鏡下觀察細胞染色效果,背景呈淡藍色,成軟骨細胞呈紫紅色。(注意:染色液可重複使用,建議收集。)
4. 3D成軟骨誘導分化實驗步驟
①建議取第3~5代、純度達90%以上、狀態良好的間充質幹細胞,將其消化下來,計數。調整細胞濃度,按照每管3~4×105cell將細胞轉移至15mL離心管中,20℃,250×g離心4min。
②棄上清,每管加入0.5mL預混液,重懸細胞沉澱。20℃,150×g離心5min。
③棄上清,每管加入0.5mL成軟骨誘導分化完全培養(yang) 基重懸細胞沉澱,20℃,150×g離心5min。
④將離心管樹立放置於(yu) 37℃,5%CO2,飽和濕度的培養(yang) 箱中培養(yang) ,擰鬆離心管蓋以便於(yu) 氣體(ti) 交換。(注意:此步驟無需重懸細胞,且24h內(nei) 不可晃動離心管。)
⑤約24h~48h後,細胞出現聚團現象,輕彈離心管底部使軟骨球脫離管底懸浮於(yu) 培養(yang) 液中。
⑥每2~3day換用新鮮的誘導分化完全培養(yang) 基,持續誘導三周後,即可將培養(yang) 液更換為(wei) 固定液(4%中性甲醛),將軟骨球固定,後續進行切片染色鑒定實驗。
質量控製
無菌檢測(細菌、真菌和支原體(ti) 檢測)
pH測試
滲透壓檢測
內(nei) 毒素
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注意事項
僅(jin) 限科研用。
培養(yang) 體(ti) 係中的一些組分是對人體(ti) 健康有害的物質,請不要用暴露的皮膚接觸培養(yang) 體(ti) 係的液體(ti) 和有培養(yang) 體(ti) 係的液體(ti) 殘留的容器內(nei) 部;這部分有害物質的濃度和危害性都較低,如有接觸,立即用自來水衝(chong) 洗即可
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