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牛肺炎(CBP)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR法)
點擊次數:524 更新時間:2024-07-18

牛肺炎(CBP)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR法

【產(chan) 品名稱】

通用名稱:牛肺炎(CBP)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR法)

 

【包裝規格】50T/盒

                                                                    

【預期用途】

牛傳(chuan) 染性胸膜肺炎又稱牛肺疫,是由絲(si) 狀支原體(ti) 引起的一種急性或慢性、接觸性傳(chuan) 染病。以肺小葉間淋巴管漿液性炎症,小葉間組織漿液性纖維素性浸潤,肺實質纖維蛋白性壞死性炎症,繼以患病肺部出現貧血性壞死,常伴有漿液性、纖維素性胸膜炎為(wei) 特征。本試劑盒適用於(yu) 檢測呼吸道、肺部等樣本中的牛肺炎,用於(yu) 牛肺炎感染的輔助診斷。

 

【檢驗原理】

本試劑盒采用TaqMan探針法實時熒光PCR技術,設計一對牛肺炎特異性引物,結合一條特異性探針,用熒光PCR技術對牛肺炎的核酸進行體(ti) 外擴增檢測,用於(yu) 臨(lin) 床上對可疑感染者的病原學診斷。

 

【試劑組成】

     

        

CBP酶液

       25μL×1管

CBP反應液

      975uL×1管

CBP陽性質控品

      50μL ×1管

陰性質控品

     50μL ×1管

說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

 

【儲(chu) 存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反複凍融不超過5次,有效期12個(ge) 月。

 

適用儀(yi) 器

ABI 、安捷倫(lun) MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等係列熒光定量PCR檢測儀(yi) 。

 

【標本采集】

    疑似患病牲畜取呼吸道樣本或胸、肺部樣本進行檢測。

 

【保存和運輸】

上述標本短期內(nei) 可保存於(yu) -20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過6個(ge) 月,標本運送應采用2~8℃冰袋運輸,嚴(yan) 禁反複凍融。

 

使用方法

1. 樣品處理(樣本處理區)

1.1 樣本前處理

組織樣品:每份組織分別從(cong) 3個(ge) 不同的位置稱取樣品約1g,手術剪剪碎混勻後取0.5g於(yu) 研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水後繼續研磨,待勻漿後轉至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL於(yu) 1.5mL滅菌離心管中;分泌液樣品直接取100μL於(yu) 1.5mL滅菌離心管中

 

1.2 DNA提取

為(wei) 了使實驗結果穩定、有效、可靠,建議使用商品化的DNA 提取試劑盒進行提取,嚴(yan) 格按照對應試劑盒說明書(shu) 進行操作。

 

2. 試劑配製(試劑準備區)

根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR反應管管數為(wei) N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽性對照;樣品每滿7份,多配製1份),每測試反應體(ti) 係配製如下表:

試劑

CBP反應液

酶液

用量(樣本數為(wei) N)

19.5μL

0.5μL

 

3. 加樣(樣本處理區)

將步驟1提取的DNA、陽性質控品、陰性質控品各取5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

 

4. PCR擴增(核酸擴增區)

4.1 將待檢測反應管置於(yu) 熒光定量PCR儀(yi) 反應槽內(nei) ;

4.2 設置好通道、樣品信息,反應體(ti) 係設置為(wei) 25μL;

熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM檢測牛肺炎,淬滅通道(Quencher Dye)NONE,請勿選擇ROX參比熒光。

4.3 推薦循環參數設置:

步驟

循環數

溫度

時間

收集熒光信號

1

1 cycle

95℃

3min

2

40 cycles

95

15sec

55℃

30sec

 

 

5. 結果分析判定

5.1 結果分析條件設定

設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體(ti) 傾(qing) 斜時,根據分析後圖像調節Baseline的start值(一般可在3~15範圍內(nei) 調節)、stop值(一般可在5~20範圍內(nei) 調節),以及Threshold的Value值(上下拖動閾值線至高於(yu) 陰性對照),重新分析結果。

 

5.2 結果判斷

陽性:檢測通道Ct值≤35.0,且曲線有明顯的指數增長曲線。

可疑檢測通道35.0<Ct值<38.0,且出現典型擴增曲線的樣本建議重複試驗,重複試驗結果出現Ct值<38.0且有典型擴增曲線者為(wei) 陽性,否則為(wei) 陰性。

陰性:樣本檢測結果無Ct值且無明顯的擴增曲線。

 

6. 檢測方法的局限性

Ø 樣本檢測結果與(yu) 樣本收集、處理、運送以及保存質量有關(guan) ;

Ø 樣本提取過程中沒有控製好交叉汙染,會(hui) 出現假陽性結果;

Ø 陽性對照、擴增產(chan) 物泄漏,會(hui) 導致假陽性結果;

Ø 病原體(ti) 在流行過程中基因突變、重組,會(hui) 導致假陰性結果;

Ø 不同的提取方法存在提取效率差異,會(hui) 導致假陰性結果;

Ø 試劑運輸,保存不當或試劑配製不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

Ø 本檢測結果僅(jin) 供參考,如須確診請結合臨(lin) 床症狀以及其他檢測手段。

 

7. 質控標準

陰性質控品:無明顯擴增曲線且無Ct值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且Ct值≤30

以上條件應同時滿足,否則實驗視為(wei) 無效。

 

8. 性能指標

1)敏感性:內(nei) 控樣本敏感性為(wei) 100%,綜合評價(jia) 敏感性98%以上。最DI檢測限不低於(yu) 1000copies/ml。

2)特異性:100%。

3)穩定性:批內(nei) 及批間差異≤3%。

 

注意事項

Ø 所有操作嚴(yan) 格按照說明書(shu) 進行;

Ø 試劑盒內(nei) 各種組分使用前應自然融化,完全混勻並短暫離心;

Ø 反應液應避光保存;

Ø 反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

Ø 使用一次性吸頭、一次性手套和各區專(zhuan) 用工作服;

Ø 樣本處理、試劑配製、加樣需在不同區進行,以免交叉汙染;

Ø 實驗完畢後用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作台和移液器;

試劑盒裏所有物品應視為(wei) 汙染物對待,並按照《微生物生物醫學實驗室生物安全通則》進行處理

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