蔗糖合成酶(Sucrose synthase,SS)試劑盒說明書(shu)
微量法
正式測定前務必取2-3個(ge) 預期差異較大的樣本做預測定
測定意義(yi)
蔗糖是源(葉片等)光合產(chan) 物向“庫"器官運輸的主要形態。SS(EC 2.4.1.13)催化植物體(ti) 內(nei) 遊離果糖和葡萄糖合成蔗糖。
測定原理
SS催化遊離果糖與(yu) 葡萄糖供體(ti) UDPG反應生成蔗糖,蔗糖與(yu) 間苯二酚反應可呈現顏色變化,在480nm下有特征吸收峰,酶活力大小與(yu) 顏色的深淺成正比。
需自備的儀(yi) 器和用品
可見分光光度計/酶標儀(yi) 、水浴鍋、離心機、移液器、微量石英比色皿/96孔板、研缽、冰
試劑的組成和配製
提取液:液體(ti) 50mL×1 瓶,4℃保存;
試劑一:液體(ti) 2.5mL×1 瓶,-20℃保存;
試劑二:1000μg/mL 蔗糖溶液 10mL×1 瓶,4℃保存;
試劑三:液體(ti) 2mL×1 瓶,4℃保存
試劑四:液體(ti) 25mL×1 瓶,4℃保存;
試劑五:液體(ti) 6mL×1 瓶,4℃保存;
樣品測定的準備:
按照組織質量(g):提取液體(ti) 積(mL)為(wei) 1:5~10的比例(建議稱取約 0.1g 組織,加入 1mL提取液),進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
測定步驟
1、分光光度計或酶標儀(yi) 預熱30min以上,調節波長至480nm,蒸餾水調零。
2、樣本測定,(在EP管中依次加入下列試劑):
試劑名稱(μL) | 測定管 | 對照管 | 標準管 | 空白管 |
樣本 | 10 | 10 | ||
蒸餾水 | 45 | 45 | 55 | |
試劑二 | 10 | |||
試劑一 | 45 | |||
混勻,25℃準確水浴 10min | ||||
試劑三 | 15 | 15 | 15 | 15 |
沸水浴中煮沸 10min 左右(蓋緊,以防止水分散失),冷卻 | ||||
試劑四 | 210 | 210 | 210 | 210 |
試劑五 | 60 | 60 | 60 | 60 |
混勻,沸水浴30min,冷卻後,取200μL至微量石英比色皿或96孔板中,480nm下測定各管吸光值。標準管和空白管隻要做一管。每個(ge) 測定管需要設一個(ge) 對照管。
SS 活性計算
1、按照蛋白濃度計算
單位定義(yi) :每mg組織蛋白每分鍾催化產(chan) 生1μg蔗糖定義(yi) 為(wei) 一個(ge) 酶活力單位。
SS 活性(μg/min/mg prot)= {C 標準管×V1×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷(V1×Cpr)÷T=100×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷Cpr
2、按照樣本鮮重計算
單位定義(yi) :每g組織每分鍾催化產(chan) 生1μg蔗糖定義(yi) 為(wei) 一個(ge) 酶活力單位。
SS 活性(μg/min/g 鮮重) = {C 標準管×V1×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷(W×V1÷V2)÷T=100×(A 測定管-A 對照管)÷(A 標準管-A 空白管)÷W
C 標準管:標準管濃度,1000μg/mL;V1:加入反應體(ti) 係中樣本體(ti) 積,0.01mL; V2:加入提取液體(ti) 積,1mL;Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL;W:樣本鮮重,g;T :反應時間:10min。
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