萊克多巴胺
快速檢測試劑盒說明書(shu)
一、原理
本試劑盒采用間接競爭(zheng) ELISA方法,在微孔條上預包被偶聯抗原,樣本中的殘留物萊克多巴胺將和微孔條上預包被的偶聯抗原競爭(zheng) 抗萊克多巴胺抗體(ti) ,加入酶標記物後,用TMB底物顯色,樣本吸光值與(yu) 其所含殘留物萊克多巴胺的含量成負相關(guan) ,與(yu) 標準曲線比較即可得出相應殘留物萊克多巴胺的含量。
二、試劑盒特性
u 試劑盒靈敏度: 0.1ppb
u 孵育溫度: 25℃
u 孵育時間: 30min~15min
u 樣本檢測下限
尿 樣 ·············································· 0.1ppb
組 織 ·············································· 0.4ppb
飼 料 ·················································1ppb
u 交叉反應率
萊克多巴胺(Ractopamine)······················ 100%
多巴酚丁胺 ··················································<1%
沙丁胺醇(Salbutamol ) ··························<0.1%
克倫(lun) 特羅(Clenbuterol)···························· <0.1%
u 樣本回收率
尿 樣 ······································ 95%±18%
組 織 ······································ 75%±21%
飼 料 ······································ 80%±25%
三、試劑盒組成
1 | 微量測試孔 | 每條8孔,一板12條 | |
2 | 標準液×6瓶 (1ml/瓶) | 0ppb | 0.1ppb |
0.3ppb | 0.9ppb | ||
2.7ppb | 8.1ppb | ||
3 | 酶標記物 | 7ml | 紅色帽 |
4 | 抗體(ti) 工作液 | 10ml | 藍色帽 |
5 | 底物A液 | 7ml | 白色帽 |
6 | 底物B液 | 7ml | 黑色帽 |
7 | 終止液 | 7ml | 黃色帽 |
8 | 20X濃縮洗滌液 | 40ml | 白色帽 |
四、所用儀(yi) 器、試劑
具備的儀(yi) 器:酶標儀(yi) 、均質器、振蕩器、離心機、刻度移液管、天平(感量0.01g)、氮吹儀(yi) 、恒溫箱、打印機
微量移液器:單道 20~200µl、單道100~1000µl、多道30~300 µl
試 劑:甲醇、無水硫酸鈉、正己烷、乙腈
五、樣本前處理步驟
u 樣本處理前須知
(a)實驗中必須使用一次性吸頭,吸取不同試劑時要更換吸頭。
(b)實驗之前須檢查各種實驗器具是否幹淨,必要時可對實驗器具進行清潔,以避免汙染幹擾實驗結果。
u 樣本處理:
(a)尿樣本的處理方法
取20µl清亮尿樣直接測定(如果尿樣渾濁一定要過濾或4000r/min離心10min,直至得到清亮尿樣),暫不使用的樣本應冷凍保存。
樣本稀釋倍數: 1倍
(b)組織樣本處理方法
1、 稱2±0.05g均質後的組織至50ml離心管中,加入6ml去離子水,充分振蕩2min,室溫4000r/min以上離心10min(注:若組織樣本中油脂含量較高,可在振蕩後放入85℃水浴10min後再離心);
2、 取20µl上層液進行分析。
樣本稀釋倍數: 4倍
(c)飼料樣本處理方法
1、 稱1.0±0.05g研碎的飼料樣品於(yu) 50ml離心管中,加入10ml甲醇,再加入5g無水硫酸鈉,充分振蕩2min;15℃ 4000r/min以上離心10min;
2、 吸出離心後的上清液1ml,於(yu) 50~60℃氮氣流或空氣流吹幹,用1 ml 去離子水溶解幹燥後的殘留物,再加入1ml正己烷混合30s ;15℃ 4000r/min以上離心5min;去除上層有機相;
3、 取下層20 µl用於(yu) 分析。
樣本稀釋倍數:10
六、 酶標免疫分析程序:
u 測定前應須知:
1、 使用前將需用試劑和板條的溫度回升至室溫(20-25℃)。
2、 使用之後立即將所有試劑放回2~8℃。
3、 在ELISA分析中的再現性,很大程度上取決(jue) 於(yu) 洗板的一致性,正確的洗板操作是ELISA測定程序中的要點。
4、 所有恒溫孵育過程,避免光線照射,用蓋板膜蓋住微孔板。
u 操作步驟:
1、 從(cong) 2~8℃冷藏環境中取出所需試劑,室溫(20-25℃)平衡30min以上,注意每種液體(ti) 試劑使用前均須搖勻。
2、 取出框架及需要數量的微孔,將不用的微孔放入自封袋,保存於(yu) 2~8℃。
3、 配液:將40ml濃縮洗滌液(20倍濃縮)用去離子水按照1:19稀釋(1份濃縮洗滌液+19份去離子水),或按所需用量配製洗滌液。
4、 編號:將樣本和標準品對應微孔按序編號,每個(ge) 樣本和標準品做2孔平行,並記錄標準孔和樣本孔所在的位置。
5、 加標準品/樣本20µl/孔到各自的微孔中,然後加酶標記物50µl/孔,再加入80µl/孔的抗體(ti) 工作液,用蓋板膜蓋板,輕輕振蕩混勻,25℃環境反應30min。
6、 將孔內(nei) 液體(ti) 甩幹,用稀釋的洗滌液250µl/孔洗板4~5次,每次間隔15-~30秒,用吸水紙拍幹(拍幹後未清除的氣泡可用幹淨的槍頭刺破)。
7、 顯色:加入底物A液50µl/孔,再加入底物B液50µl/孔,輕輕振蕩混勻,25℃環境中避光顯色15min。
8、 測定:加入終止液50µl/孔,輕輕振蕩混勻,設定酶標儀(yi) 於(yu) 450nm處(建議用雙波長450/630nm檢測,5min內(nei) 讀數),測定每孔OD值。
七、結果判定
結果判定有兩(liang) 種方法,粗略判定可用第1種方法,定量判定用第2種方法。注意樣本吸光度值與(yu) 其所含萊克多巴胺量成負相關(guan) 。
1、粗略判定:
用樣本的平均吸光度值與(yu) 標準值比較即可得出其濃度範圍(ng/ml)。假設樣本1的吸光度值為(wei) 0.3,樣本2的吸光度值為(wei) 1.0,標準液吸光度值分別是:0ppb為(wei) 2.243; 0.1ppb為(wei) 1.816;0.3ppb為(wei) 1.415;0.9ppb為(wei) 0.74;2.7ppb為(wei) 0.313;8.1ppb為(wei) 0.155。則樣本1的濃度範圍是2.7ppb~8.1ppb;樣本2的濃度範圍是0.3ppb~0.9ppb,乘以其對應的稀釋倍數即為(wei) 樣本中萊克多巴胺實際濃度。
2、定量分析
(1)百分吸光率的計算,標準品或樣本的百分吸光率等於(yu) 標準品或樣本的吸光度值的平均值(雙孔)除以第一個(ge) 標準(0標準)的吸光度值,再乘以100%,即
百分吸光率(%)= | B | ×100% |
B0 |
B—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值
B0—0ng/ml標準溶液的平均吸光度值
(2)標準曲線的繪製與(yu) 計算
以標準品百分吸光率為(wei) 縱坐標,以萊克多巴胺標準品濃度(ng/ml)的半對數為(wei) 橫坐標,繪製標準曲線圖。將樣本的百分吸光率代入標準曲線中,從(cong) 標準曲線上讀出樣本所對應的濃度,乘以其對應的稀釋倍數即為(wei) 樣本中萊克多巴胺實際濃度。
若利用試劑盒專(zhuan) 業(ye) 分析軟件進行計算,更便於(yu) 大量樣本的準確、快速分析。(歡迎來電索取)
八、 注意事項
1、 室溫低於(yu) 25℃或試劑及標本未回到室溫(20~25℃)會(hui) 導致所有標準的OD值偏低。
2、 在洗板過程中如果出現板孔幹燥的情況,則會(hui) 伴隨著標準曲線不成線性,重複性不好的現象。所以洗板拍幹後應立即進行下一步操作。
3、 混合要均勻,否則會(hui) 出現重複性不好的現象。
4、 反應終止液為(wei) 2M硫酸,避免接觸皮膚。
5、 不要使用過了有效日期的試劑盒;稀釋或攙雜使用會(hui) 引起靈敏度、OD值變化;不要交換使用不同批號的盒中試劑。
6、 不用的微孔板放進自封袋重新密封;標準物質和無色的發色劑對光敏感,因此要避免直接暴露在光線下。
7、 顯色液若有任何顏色表明變質,應當棄之。標準品1的吸光度值小於(yu) 0.5時,表示試劑可能變質。
8、 該試劑盒最佳反應溫度為(wei) 25℃,溫度過高或過低將導致檢測吸光度值和靈敏度發生變化。
九、儲(chu) 藏條件和保質期
1、 儲(chu) 藏條件:試劑盒於(yu) 2~8℃保存,不要冷凍。
2、 保 質 期:該產(chan) 品有效期為(wei) 1年,生產(chan) 日期見包裝盒。
提示:酶標板真空包裝袋若有漏氣,酶標板仍然正常有效,不影響實驗結果,請放心使用。
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